AVALIAÇÃO CITOTÓXICA DO EXTRATO ALCOÓLICO DE PERESKIA ACULEATA MILLER EM ARTEMIA SALLINA LEACH

ISBN 978-85-85905-23-1

Área

Iniciação Científica

Autores

Marques Chagas, R. (IFRJ CAMPUS NILÓPOLIS) ; Leal de Castro, D. (UFRRJ)

Resumo

Pereskia aculeata Miller é uma trepadeira arbustiva conhecida comumente como ora-pro-nobis. Apresenta elevado teor de mucilagem e proteína, sendo empregada na indústria alimentícia e farmacêutica. Na medicina popular, é utilizada externamente como emoliente. Na busca de substância(s) biologicamente ativa(s), este trabalho realizou um estudo fitoquímico biomonitorado no qual foi testado o extrato alcoólico obtido das folhas desta espécie, sendo possível então avaliar e dimensionar a toxicidade relativa dessa substância. O presente projeto teve como principal objetivo realizar o ensaio toxicológico nessa espécie vegetal utilizando a Artemia salina como bioindicador, teste este considerado como uma das ferramentas mais utilizadas para a avaliação preliminar de toxicidade.

Palavras chaves

Análise fotoquímica; Bioensaio; Toxicidade

Introdução

O uso de plantas e seus derivados, com finalidades terapêuticas, tem sido realizado de maneira extensiva e crescente ao redor do mundo, conforme dados obtidos junto ao mercado farmacêutico e aos altos números que circundam a comercialização de fitomedicamentos, observados na ultima década (NIERO, 2010). A crescente busca por fontes naturais aparece como uma alternativa ao uso dos constituintes sintéticos (como os antioxidantes, por exemplo) para fármacos e a ora-pro-nobis se apresenta como uma das fontes naturais mais procuradas. (SOUSA et al., 2014). Comumente chamada de ora-pro-nobis, trepadeira-limão e groselha-de-barbados, a espécie vegetal Pereskia aculeata Miller é uma trepadeira semilenhosa, que pode atingir 10m de altura, com ramos longos e espinhos na axila das folhas elípticas e carnosas (ALZUGARAY; ALZUGARAY, 1988; LORENZI; SOUZA, 1995; MANKE, 1998). É oriunda de regiões tropicais e subtropicais como Brasil, África do Sul e Argentina. Por apresentar alto teor de mucilagem, essa espécie acaba sendo empregada externamente como emoliente na medicina popular e consumida como fonte alimentar (CRUZ, 1995). Em virtude da presença do biopolímero arabinogalactana e do elevado conteúdo protéico, essas plantas têm despertado o interesse das indústrias alimentícia e farmacêutica (MERCÊ et al., 2001). Visando avaliar a introdução desse produto natural como matéria-prima para a preparação de novas moléculas com potencial aplicação na área de fármacos, resolveu-se testar sua toxicidade. Os testes de toxicidade são elaborados com os objetivos de avaliar ou prever os efeitos tóxicos nos sistemas biológicos e dimensionar a toxicidade relativa das substâncias (FORBES e FORBES, 1994). O ensaio de toxicidade utilizado nesse projeto foi o que utiliza o microcrustáceo Artemia salina como bioindicador, ensaio este desenvolvido para detectar compostos bioativos em extratos vegetais (MEYER et al., 1982). A Artemia salina é uma espécie de microcrustáceo da ordem Anostraca, encontrado em águas salgadas (CARVALHO et al., 2008). É um crustáceo filtrador que se alimenta basicamente de bactérias, algas unicelulares, pequenos protozoários e detritos dissolvidos no meio. A filtração ocorre nos toracópodos, encarregados de conduzir as partículas alimentícias em direção ao sistema digestivo. A Artemia é utilizada como alimento vivo para peixes, sendo seus ovos encontrados em lojas de aquaristas. Essa espécie de microcrustáceo marinho tem sido utilizada em experimentos laboratoriais como um bioindicador, pois o seu grau de tolerância é reduzido e específico em relação ao fator ambiental, de modo que apresenta uma resposta nítida frente a pequenas variações na qualidade do ambiente. A letalidade desse organismo tem sido utilizada para identificação de repostas biológicas, nas quais as variáveis como a morte ou vida são as únicas envolvidas (MEYER et al., 1982). Experimentos que visam testar a toxicidade utilizando modelos baseados em ratos em crescimento apresentam desvantagens para o método como o gasto de quantidade de amostra e o elevado custo (RIOS, 1995). A utilização do crustáceo Artemia é uma espécie de fácil manipulação em laboratório e baixo custo econômico (CALOW, 1993). Estudos comprovam a ação tóxica de várias substâncias naturais ao crustáceo Artemia (RIOS, 1995). Portanto, o presente trabalho tem como objetivo principal testar a ação dos bioativos da espécie Pereskia aculeata Miller frente a Artemia salina.

Material e métodos

O extrato alcoólico foi preparado a partir de folhas recém colhidas da planta que foram postas para secar naturalmente, dando uma massa de aproximadamente 17g; esta massa foi transferida para um balão volumétrico de 500 mL, onde fez-se a adição de 100 mL de etanol. Foi utilizada água do mar para a eclosão dos ovos de Artemia salina em local arejado e sob constante iluminação como fonte de calor (para isso fez-se o uso de uma lâmpada), por um período de 48 horas. Após a passagem do tempo estabelecido as larvas eclodidas foram postas em tubos de ensaio contendo 5 mL de água do mar, adicionando-se 10 microcrustáceos por tubo. O teste foi realizado em triplicata, com as seguintes concentrações do extrato alcoólico: 10, 100 e 1000 μg/mL. Além disso, realizou-se o ensaio em branco, também em triplicata. Após 24 horas houve a contagem do número de nauplios, de modo a avaliar o índice de mortalidade, sendo possível determinar a intensidade da toxicidade do extrato alcoólico através do cálculo de DL50.

Resultado e discussão

Os náuplios, sob as condições descritas para o teste, foram recontados após 24h, e observou-se o nível de mortalidade em cada dose e o número de vivos, sendo possível determinar a intensidade da toxicidade do extrato alcoólico através do cálculo de DL50. No ensaio em branco, como era de se esperar, o número de indivíduos vivos permaneceu o mesmo. Na concentração de 10 μg/mL do extrato alcoólico, observou-se que o número de náuplios também se manteve inalterado. Com o aumento da concentração para 100 μg/mL, observou-se que nenhum náuplio se manteve vivo em nenhum dos três tubos (teste foi feito em triplicata). O resultado foi o mesmo para os tubos com soluções de concentração igual a 1000 μg/mL. No gráfico da figura 1, tem-se o resultado dos valores de DL50 (dose letal), obtidos a partir da equação DL50 = (% de larvas vivas)/log⁡〖da dose〗. O valor DL50 expressa a concentração do extrato ou do padrão, necessária para provocar a morte de 50% dos exemplares de Artemia salina presentes em um cultivo. A toxicidade foi calculada a partir do gráfico do percentual de animais vivos contra o logarítmico das concentrações do extrato alcóolico, utilizando o programa Microsoft Office Excel 2010, e a DL50 foi determinada com o ajuste dos pontos através da regressão linear. A dose letal obtida para o extrato alcóolico foi de 31,6 μg/mL, conforme pode ser conferido no cálculo a seguir: 50 = -40x + 110 X = 1,5 = log da dose letal Dose letal 50% = 31,6 μg/mL Segundo Dolabela (1997), a classificação da toxicidade dos extratos em Artemia salina podem ser classificados como altamente tóxicos se a dose letal 50% (DL50) for inferior a 80 μg/mL; moderadamente tóxicos para valores entre 80 e 250 μg/mL; e pouco tóxicos se esse valor for superior a 250 μg/mL. Portanto, o extrato alcoólico pode ser classificado como altamente tóxico de acordo com essa escala de toxicidade. Houve um índice de mortalidade igual a 100% quando a concentração aumentou para 100 μg/mL, de modo que os pontos não seguiram o formato de uma reta, sendo necessário portanto o cálculo do desvio padrão (em função do teor de larvas vivas), que foi igual a 57,735.

Figura 1

Gráfico de regressão linear do extrato alcoólico de Pereskia aculeata Miller

Conclusões

O teste de toxicidade do extrato alcoólico de Pereskia aculeata Miller demonstrou um alto nível de toxicidade (DL50= 31,6 µg/mL). Em uma avaliação qualitativa dos metabólitos secundários do extrato alcoólico das folhas de Pereskia aculeata Miller foram identificados a presença de grupos que possuem determinada toxicidade como triterpenóides, o que justifica o resultado do teste.

Agradecimentos

Referências

ALZUGARAY, D.; ALZUGARAY, K. 1988. Enciclopédia de plantas brasileiras. São Paulo: Três.
CALOW, P. Marine and estuarine invertebrate toxicity tests. In: HOFFMAN, D. et al. Handbook in cytotoxicology. Oxford: Blackwell Scientific Publication, 1993. v. 1. p. 1-5.
CARVALHO, C. A. de. et al. Cipó-cravo (Tynnanthus fasciculatus miers- Bignoniaceae): Estudo fitoquímico e toxicológico envolvendo Artemia salina . Revista Eletrônica de Farmácia Vol 6(1), 51-58, 2009.
Cruz, G.L. 1995. Dicionário das plantas úteis do Brasil. 5.ed. Rio de Janeiro: Bertrand Brasil.
DOLABELA, M.F. Triagem in vitro para atividade antitumoral e anti Trypanossoma cruzi de extratos vegetais, produtos naturais e substâncias sintéticas. Belo Horizonte: Universidade Federal de Minas Gerais – UFMG, 1998.
FORBES, V. E.; FORBES, T. L. Ecotoxicology in theory and practice. Londres: Chapman and Hall, 1994. 247 p.
Lorenzi, H.; Souza, H. M. 1995. Plantas ornamentais no Brasil: arbustivas, herbáceas e trepadeiras. Nova Odessa: Plantarum.
Manke, E. 1998. Cactus. s.l.: Barron’s.
MERCÊ, A.L.R. ; LANDALUZE, J.S.; MANGRICH, A.S.; SZPOGANICZ, B.; SIERAKOWSKI, M.R. 2001. Complexes of arabinogalactan of Pereskia aculeata and Co 2+, Cu 2+, Mn 2+ and Ni 2+. Bioresour Technol 76: 29-37.
MEYER, B. N.; FERRIGNI, N. R.; PUTNAN, J. E.; JACOBSEN, L. B.; NICHOLS, D. E.; Mcl. AUGHLIN, J. Brine shrimp: A convenient general bioassay for active plant constituents. Journal of Medical Plant Research, v. 45, n.1, p. 31-34, 1982.
NIERO, R. Fármacos, Fitofármacos e Fitoterápicos: Abordagem Econômica e de Mercado. In: BRESOLIN, T.M.B.; CECHINEL FILHO, V. (ORG.). Fármacos e Medicamentos - Uma abordagem multidisciplinar. 2ed.Rio de Janeiro, p.1-12, 2010.
SOUSA, R. M. F; LIRA, C. S; RODRIGUES, A. O; MORAIS, S. A. L; QUEIROZ, C. R. A. A; CHANG, R; AQUINO, F. J. T; MUÑOZ, R. A. A; DE OLIVEIRA, A. Atividade antioxidante de extratos de folhas de ora-pro-nobis (Pereskia aculeata Mill.) usando métodos espectrofotométricos e voltamétricos in vitro. Bioscience Jobs, Uberlândia, v. 30, s. 1, p. 448-457, 2014.
SOUZA, W. 1998. Técnicas básicas de microscopia eletrônica aplicadas às Ciências Biológicas. Rio de Janeiro: Sociedade Brasileira de Microscopia Eletrônica.

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